如何保存邮寄实验中不同检测的样本？

1、组织样本

a、组织离体清洗后应立即固定，固定液一般10%中性福尔马林或4%多聚甲醛(尽量不要用酒精固定)，室温保存。

b、固定用的器皿必须根据样本体积而定，组织固定液的体积应是样本体积的10-15倍 ，且不宜用V型底，细长或小管固定。大组织标本应切开固定，以免中间部分自容腐败，如有特殊要求，请自行根据实验要求选择其他处理方式。

c、如果是冰冻切片标本，必须新鲜(处理步骤：组织离体后用OCT包埋，-80℃保存。送检过程中必须有足够多干冰或冰袋)。

d、特殊的组织需要用特定的固定液，避免样本发生变化，影响后续检测。（参考下图）

e、胃、肠道的内容物处理需特别注意：切忌不能用挤的方式 ，会破坏黏膜 ，可以用针打10%中性福尔马林或者4%多聚甲醛到胃和盲肠 里面去固定一会，半个小时切开用10%氯化钠溶液清洗 ，然后再固定。

f、对于皮肤、肺等比较轻，容易漂浮在固定液上面的组织：可以选择在固定液上面放沾湿的棉花团压住 ，避免组织漂浮在固定液上导致固定不充分。或者再完整的肺组织离体后，往主支气管中灌固定液冲洗整个肺部，并使肺部充盈 ，然后把充盈后的整肺放入固定液中送检。

2、细胞样本

a、贴壁细胞：细胞消化后，离心，倒掉培养液保留细胞沉淀，用PBS洗一遍，离心倒掉液体保留细胞沉淀后 ，加固定液(10%中性福尔马林或4%多聚甲醛)重悬，常温送检。

b、悬浮细胞：离心，倒掉培养液保留细胞沉淀，用PBS洗一遍，离心倒掉液体保留细胞沉淀后 ，加固定液 (10%中性福尔马 林或4%多聚甲醛)重悬，常温送检。

3、电镜样本

a、取样组织2mmX2mm大小，尽量薄。如来不及修整组织大小可先于电镜固定液内固定半小时左右待组织变硬以后再修整组织进行后固定。超出此范围后组织会无法完全固定，后续实验无法完成，务必请重视此过程。

b、取材时尽量精确到需要观察的目的部位（如观察肾小球取肾皮质；观察胰岛取胰岛丰富的胰尾；皮肤，肠胃等在固定液中易打卷的组织可将组织粘在滤纸上进行固定）。

c、注意避免镊子挤压等机械损伤，刀片要锋利避免挫伤组织。

d、织取下后立即投入电镜固定液内室温固定2h，再转移至4℃保存，4℃冰袋运输，在保存和运输过程中固定液切勿冷冻结冰。4℃时样本可保存1个月左右。

1、血液样本

根据不同的检测指标，选择不同的血液抗凝剂。都为-80℃保存。，以下样本尽量新鲜！

血清样本收集：无抗凝剂的红头管/普通EP管采集全血标本，需要预留一定空间便于血清分离，采集后4℃静置10-20分钟， 3000-3500prm，离心10-15分钟，取上清于EP管中，于-20℃或-80℃保存运输，中途应避免反复冻融。请勿 晃动采血管，红细胞易破碎，出现溶血，从而影响实验结果。

血浆样本收集：可用肝素钠（绿头管）或EDTA（紫头管）做抗凝剂，缓慢颠倒十次使血浆与抗凝剂充分混合，4℃静置10- 20分钟，3000-3500prm，离心10-15分钟，取上清于EP管中，于-20℃或-80℃保存运输，中途应避免反复 冻融。请勿激烈晃动采血管，红细胞易破碎，出现溶血，从而影响实验结果。

组织匀浆样本收集：用预冷的生理盐水冲洗组织，去除残留血液（匀浆中裂解的红细胞会影响测量结果）与其他物质，称重。匀 浆介质的体积总量(ul)是组织块总量(mg)的9倍，制备成10%的匀浆液。加入玻璃匀浆器中，于冰水浴条件下充分 研磨。为了进一步裂解组织细以对匀浆液进行超声破碎，或反复冻融。最后将匀浆液于3000-3500prm，离 心5~10分钟，取上清检测。如匀浆制备有困难，可联系公司相关技术支持咨询。

总结：

生化：建议优先选择血清，其次选择肝素抗凝血浆；

ELISA：建议优先选择血清，其次选择肝素或EDTA抗凝血浆；

凝血实验：只能选择枸橼酸钠抗凝血浆；

血常规：只能选择EDTA抗凝全血；

几种检测常用的真空采血管介绍(参考下图）

2、组织、细胞样本

动物组织样本取材

a)取材应在冰上进行，取材后组织用生理盐水冲洗干净，去除血渍和污物，并剔除非研究所需的组织

b)吸干水渍并切小块，放入已标记的冻存管中，液氮速冻后，转运至-80℃冰箱保存